domingo, 21 de febrero de 2016

Observación de tejidos vegetales y animales

Muchos epitelios, tanto animales como vegetales, constituyen un excelente material para observar células al microscopio óptico. Las células epiteliales se mantienen unidas unas a otras formando capas continuas, lo que facilita la extracción de películas de células, fácilmente extensibles sobre un porta y que pueden teñirse directamente con azul de metileno.

Tejidos animales:

Tejidos epiteliales: Conjunto de células estrechamente unidas que o bien tapizan las superficies corporales (tanto internas como externas) o se agrupan para formar glándulas.

Tejidos conectivos o conjuntivos: Son un variado tipo de tejidos.Los tejidos conectivos se originan a partir de las células mesenquimáticas embrionarias y forman la mayor parte del organismo, realizando funciones tan variadas como nutrición, reserva, etc. La clasificación de los tejidos conectivos puede variar según los diferentes autores.

Tejido muscular: Formado por células que pueden contraerse, lo que permite el movimiento de los animales o de partes de su cuerpo.


Tejido nervioso: Está constituido por células especializadas en procesar información. La reciben del medio interno o externo, la integran y producen una respuesta que envían a otras células, sobre todo a las células musculares.


Observación de tejido muscular estriado:

MATERIAL:

- Microscopio
- Portaobjetos
- Cubreobjetos
- Frasco lavador
- Aguja enmangada
- Pinzas
- Azul de metileno
- Trozo de carne
- Cubeta de tinción

PROCEDIMIENTO:

     1. Con la aguja enmangada hacemos surcos paralelos a las fibras. Se separan paquetes musculares. Cogemos algunos y con las pinzas los ponemos en el porta.
     2. Sobre la muestra vertemos unas gotas de alcohol y esperamos a que este se evapore.
     3. Se tiñe (durante un minuto) la muestra con azul de metileno. Lavamos con agua, sujetando la fibra.
     4. Depositamos una gota de agua sobre el tejido y el cubre.
     5. Observamos la muestra en el microscopio y vemos sus partes.


Tejidos vegetales:


Tejidos protectores: son aquellos tejidos encargados de proteger a la planta, formando una capa externa en ella para así resguardarla de los agentes externos; está conformada por el tejido epidérmico o epidermis y el tejido suberoso o súber.

Tejidos conductores: estos tejidos se forman a partir de diferentes tipos de células y de ahí se les denomina como los tejidos más complejos, dado a que en su mayoría derivan de las células meristemáticos; existen dos tipos de tejidos conductores que son el xilema y el floema, los cuales constituyen el sistema vascular o conductor de los vegetales.

Tejidos de crecimiento: estos también llamados meristemos se constituyen por células jóvenes que se dividen continuamente por medio de una mitosis; las células de estos originan las células que forman la planta. Los tejidos de crecimiento poseen un núcleo grande con abundante citoplasma.

Tejidos parenquimáticos: se encargan de nutrir a la planta, localizado en todos los vegetales, se ocupan de llenar aquellos espacios libres que otros órganos y tejidos dejan; existen varios tipos, donde uno de ellos es el responsable de realizar la fotosíntesis.

Tejidos de sostén: estos se constituyen por células cuyas paredes celulares son gruesas para aportar una resistencia mecánica grande; comparten la misma función pero se diferencian por su estructura y la textura de las paredes celulares que poseen, además por la localización de cada uno dentro del vegetal.

Tejidos secretores: constituidos por estructuras diversas, con la única característica en común es la de almacenar y segregar sustancias a las cavidades externas e internas del vegetal; existen varios tipos de estos tejidos de acuerdo a su localización.

Tejidos meristemáticos: son los responsables del crecimiento vegetal, en un sentido longitudinal y diametral; las células en estos tejidos poseen una doble capacidad de diferenciación y de multiplicación.


Observación de epidermis en una hoja de lirio:

MATERIALES:

- Microscopio
- Frasco lavador
- Portaobjetos y cubreobjetos
- Aguja enmangada
- Pinzas
- Cubeta de tinción
- Azul de metileno
- Hoja de lirio
- Bisturí
- Cuentagotas

PROCEDIMIENTO:

     1. Haz una suave incisión (perpendicular al envés de la hoja) con el bisturí. Levanta uno de los bordes con las pinzas para obtener una lámina muy fina, translúcida como el celofán. Procura no arrastrar el tejido de color verde de debajo.
     2. Coloca el fragmento (de al menos 0,5 cm de lado) sobre el portaobjetos. Vierte unas gotas de azul de metileno y déjalo teñir durante 2-3 minutos.
     3. Echa unas gotas de agua sobre la muestra para retirar el azul que sobra. Pon una gota de agua y coloca sobre ella el cubreobjetos.




FOTOS:


Médula de oveja

Pulmón de mamífero
Trompa uterina

Lengua de mamífero

Tejido muscular estriado

domingo, 7 de febrero de 2016

Observación de la mucosa bucal.

MATERIAL:

- Microscopio, portas y cubres
-Mechero de alcohol
-Palillo de dientes 
- Cuentagotas 
- Cubeta de tinción
-Azul de metileno 
- Frasco lavador con agua
-Pinzas de madera

PROCEDIMIENTO:

1-. Raspar suavemente el carrillo interno de la boca con un palillo de dietes, después depositar la sustancia blanquecina en un porta objetos con una gota de agua y extiendelo bien con ayuda del bastoncillo o palillo.

2-. Se cubre toda la muestra con azul de metileno durante 2-3 minutos, pasados los cuales lavamos el porta abundantemente, colocándolo inclinado y echando agua suavemente con el cuentagotas o el frasco lavador para que sea arrastrado el colorante sobrante.

3.Calentar suabemente la muestra en el portaobjetos con ayuda de las pinzas del madera hasta que el agua se evapore.

4-. Después de evaporar el agua por completo, se cubre la muestra con azul de metileno durante 2-3 minutos reposando. P
asados los cuales lavamos el porta abundantemente, colocándolo inclinado y echando agua suavemente con el cuentagotas o el frasco lavador para que sea arrastrado el colorante sobrante. Esto hay que hacerlo hasta que no salga color.

5-. Observar la preparación al microscopio a pocos aumentos. Escoger para la observación, moviendo el porta sobre la platina, la zona mejor teñida. Después, ir colocando aumentos mayores.

Célula de la mucosa encontrada en el interior de la mejilla 




Fotos de la práctica:

Observación desde el microscopio de la mucosa bucal



Observacion del frotis sanguineo

Teoria:
Un frotis o extendido de sangre es un mecanismo científico que consiste en el extendido de una gota de sangre sobre la superficie de un portaobjetos o de un cubreobjetos, con el fin de analizarla posteriormente al microscopio.
Los frotis de sangre deben ser bien nivelados y para obtener buenos resultados es necesario que:



Materiales:
-Microscopio 
-Lanceta esteril
-Algodon
-Alcohol
-Portaobjetos
-Cubreobjetos

Proceso:

- Masajear la yema del dedo y limpiarla con un algodón empapado el alcohol.
- Mantener presionado el dedo y realizar una punción suavemente con la lanceta.

  1. Tanto portaobjetos como cubreobjetos deben estar bien limpios y desengrasados (preferentemente nuevos).
  2. La gota de sangre usada para la preparación del frotis no debe ser muy grande ni pequeña, de preferencia del tamaño de la cabeza de un alfiler (entre 2 y 3 mm), obtenida por punción capilar.
  3. La lectura de las extensiones se hará en las zonas donde los eritrocitos "casi se tocan".
Extensión de portaobjetos
  1.  Para llevar a cabo las extensiones en portaobjeto se coloca una gota de sangre de 3 a 4 mm de diámetro, a unos 2 o 3 cm de uno de los extremos del portaobjetos, este se coloca en una superficie plana y lisa. Con el borde de otro portaobjeto, con el que se toca la gota de sangre, la cual se desliza por capilaridad a todo lo largo de el canto de dicho portaobjeto y con un movimiento rápido y uniforme, en un ángulo de 45 grados se desliza el portaobjetos dejando una capa de sangre en la superficie del otro. El espesor del extendido debe ser delgado.




    Foto de la práctica:

domingo, 17 de enero de 2016

OBSERVACIÓN DE CÉLULAS VEGETALES

Célula vegetal: la célula es un sistema muy complejo el cual es el centro de intercambios intensos en energía. Como todos seres vivos, la célula se nutre, crece, se multiplica y muere. Las células de las plantas eucarióticas (tienen un núcleo delimitado por una membrana). Las células vegetales presentan:

     - Pared celular: rígida que evita cambios de forma y posición.     - Plastidios: estructuras rodeadas por una membrana, que sintetizan y almacenan alimentos     - Vacuolas: tienen la función de transportar y almacenar nutrientes, agua y productos de desecho.     - Membrana nuclear, que establece una barrera entre la cromatina (material genético) y el citoplasma.     - Mitocondrias: convierten los nutrientes en energía que utiliza la planta.     - Cloroplastos: unos orgánulos capaces de sintetizar azúcares a partir de dióxido de carbono, agua y luz solar.     - Aparato de Golgi: es un orgánulo cuya función es completar la fabricación de algunas proteínas.     - Ribosomas: están encargados de sintetizar proteínas a partir de la información genética     - Retículo Endoplasmático: es una red interconectada que forma tubos aplanados y sáculos comunicados entre sí, que intervienen en funciones relacionadas con la síntesis proteica, metabolismo de lípidos y algunos esteroides, así como el transporte intracelular



PRÁCTICA:

Materiales:

- Cubreobjetos 
- Portaobjetos 
- Las muestras 
- Cubeta de tinción 
- Azul de metileno 
- Espátula 
- Microscopio 
- Gotero 
- Frascos pequeños con agua 
- Bisturí 
- Bulbos de cebolla 

Procedimiento:

 1. Separamos una de las capas internas de la cebolla, desprendiendo con la pinza la membranita adherida por la cara inferior cóncava de una de sus capas, llevándola al portaobjetos para humedecerla con un poco de agua destilada y evitando que se enrosque.

 2. Colocamos la muestra bien extendida y añadimos el azul de metileno hasta que este totalmente cubierta. Después, limpiamos la muestra echándole unas gotas de agua (con el gotero) y la cubrimos con el cubreobjetos.

 3. Lo ponemos en el microscopio, observando las células vegetales y su forma hexaédrica (en celdas) y alargadas.






domingo, 13 de diciembre de 2015

ESTUDIO DEL MICROSCOPIO Y SU MANEJO

Materiales:
- Microscopio óptico
-Cubreobjetos
-Portaobjetos
-Azul de metileno
-Cebolla
-Cubeta de tincion

Objetivos:
1. Conocer y manejar adecuadamente las partes del microscopio
2. Aprender a enfocar correctamente en el microscopio
3. Conocer los cuidados del microscopio
4. Aprender a preparar una muestra adecuadamente para la observación al microscopio

Partes de un microscopio óptico:



MANEJO DEL MICROSCOPIO OPTICO: 
    ILUMINACIÓN
    Mirando a través del ocular, y con el objetivo de menor aumento puesto, asegúrate de que el campo de observación está uniformemente e intensamente iluminado. Para conseguirlo deberás orientar correctamente el espejo hacia la fuente de luz (o encender la lámpara del microscopio si la lleva incorporada), abrir a tope el diafragma y poner el condensador en su posición más alta..

    COLOCACIÓN DE LA PREPARACIÓN
    Antes de colocar la preparación debemos asegurarnos de que está puesto el objetivo de menor aumento y que éste está suficientemente alejado de la platina. La preparación debe situarse de tal manera que el objeto de observación quede situado en el centro del orificio de la platina y, por supuesto, con el cubreobjetos hacia arriba.
     ·ENFOQUE
    Siempre se empieza enfocando con el objetivo de menor aumento. Mirando lateralmente el microscopio acercamos el objetivo a la preparación para después, mirando a través del ocular, enfocar alejándolo.
    La distancia a la que se debe colocar el objetivo de la preparación depende del aumento; con los objetivos de gran aumento (40 ó 100x) debe estar muy cerca (1 mm o menos).
    Después de enfocar con el objetivo de menor aumento debemos centrar, moviendo muy lentamente la preparación, la zona más interesante, pasar al objetivo siguiente girando el revólver y corregir ligeramente el enfoque con el tornillo micrométrico. En todo momento hay que asegurarse de que al girar el revólver hemos anclado el objetivo perfectamente en su posición (existe un pequeño tope que nos lo indica).
          CORRECCIÓN DE LA ILUMINACIÓN
    Frecuentemente se consigue mejorar notablemente la imagen cerrando un poco el diafragma. Acostúmbrate a accionar el diafragma después de enfocar con cada objetivo hasta conseguir la mejor visualización.
    Aunque normalmente la posición más elevada es la mejor, también puedes accionar el tornillo del condensador para buscar una mejor iluminación.
      RETIRADA DE LA PREPARACIÓN
      Una vez acabada la observación se vuelve a poner el objetivo de menor aumento, se levanta el tubo y se retira la preparación. Si no va a seguir utilizándose el microscopio debe de cubrirse con su funda de plástico.
      En las prácticas en las que se realicen observaciones con el microscopio deberán hacerse dibujos de los objetos observados. Junto a estos dibujos debe ir una indicación de los aumentos con que se ha realizado la observación. Para saber el aumento total que estamos empleando se multiplica el aumento del ocular por el aumento del objetivo que estemos utilizando.


      PARA CALCULAR EL NUMERO DE AUMENTOS: Se multiplica el numero de aumento por el  aumento del ocular.

domingo, 22 de noviembre de 2015

DISECCIÓN DE ENCÉFALO SE CORDERO

Materiales
-Cubeta de disección
- Bisturí
- Tijeras
- Pinzas
- Encéfalo de cordero 

Procedimiento:

1.- Observación de la morfología externa:
a.- El encéfalo va envuelto externamente por las tres meninges: duramadre,
externa ; aracnoides, media y piamadre, interna.
Cuando se le extrae de la caja craneana aparecen como unas pielecillas rojizas,
rotas, sobre todo en el encéfalo: estos jirones corresponden a la aracnoides; la piamadre
se conservará seguramente en toda la superficie encefálica, se reconoce fácilmente por
estar surcada de abundantes vasos sanguíneos.
b.- Visto dorsalmente (fig 1), observamos de delante a atrás tres partes distintas:
- Los hemisferios cerebrales, única parte visible del cerebro, surcados por
  circunvoluciones cerebrales y separados entre sí por una profunda hendidura
  media, la cisura interhemisférica.
- El cerebelo que está formado por tres masas, dos lóbulos cerebelosos a los
   lados y un lóbulo central o vermiforme.

 -
La médula oblonga o bulbo raquídeo, con forma de tronco de cono invertido
y truncado, sin diferenciaciones externas, parcialmente
oculto por el
cerebelo y dividido a lo largo por una cisura que se prolonga en la médula
espinal.
Si separamos, cuidadosamente, el cerebelo de los hemisferios cerebrales, se pueden ver
los Tubérculos cuadrigéminos, dos anteriores y dos posteriores más voluminosos, y la
Epífisis.
c.- Si volvemos ahora la pieza para observarla por la cara ventral veremos en
primer lugar la cisura interhemisférica y a ambos lados de ella los lóbulos olfatorios.
Algo más hacia atrás, podemos ver los nervios ópticos que se entrecruzan en el
quiasma óptico. Inmediatamente detrás aparece un orificio que señala el punto de
inserción de la Hipófisis ( Suele faltar porque al separar en encéfalo se habrá roto por su
pedúnculo, quedando la Hipófisis encajada en la Silla turca del Esfenoides):
Un poco más atrás hay una prominencia doble llamada cuerpo mamilar,
flanqueada por dos gruesos cordones
longitudinalmente llamados Pedúnculos
cerebrales que entran por debajo de la Protuberancia anular o Puente de Varolio, que es
a su vez la porción antero-ventral del bulbo raquídeo.
Por detrás de dicho Puente de Varolio asoman los dos Lóbulos del bulbo
raquídeo, que se estrechan paulatinamente, convirtiéndose en las dos mitades de la
Médula espinal.
Por último, por los bordes de toda la pieza se ven asomar por la parte delantera
los hemisferios cerebrales y por la parte posterior los hemisferios cerebelosos laterales
con sus correspondientes circunvoluciones.


2.  Observación de la anatomía interna:

a.- Con un bisturí se hace una incisión profunda siguiendo la cisura
interhemisférica pero sin llegar a cortar la pieza en dos. Se separa con cuidado los dos
hemisferios y se pone de manifiesto la masa impar llamada Cuero calloso, de color
blanquecino, que une ambos hemisferios.


Al cortar siguiendo la cisura interhemisférica, habremos dividido en dos el
cerebelo cortando el Vermis por su línea media; esto nos permitirá observar que en el
cerebelo la sustancia blanca está en el interior



Si ahora separamos completamente las dos mitades del encéfalo, podremos ver
mejor las cavidades cerebrales


  
Parte superior del encéfalo 


Parte inferior del encéfalo



Parte interior del encéfalo

domingo, 8 de noviembre de 2015

DISECCION DE OJO DE CORDERO.

MATERIALES:
-Bisturí
-Pinzas
-Tijeras
-Aguja enmangada
-Bandeja de disección
-Ojo

PROCEDIMIENTO:
1.Realizar una observación completa del exterior del globo ocular identificando las partes 
Pupila: se dilata y contrae según la cantidad de luz existente.
Iris: regula la luz que entra por la pupila aumentando y disminuyendo su tamaño.
Cristalino: enfoca la luz que entra por la pupila.
Córnea: protege el cristalino y el iris.
Retina: se compone de conos y bastones, receptores que reciben y dan información de la nitidez y el color de las imágenes.
Nervio óptico: conduce los impulsos al cerebro.

2.Se le quita la capa de grasa.

3. Con la punta de las tijeras hacer suavemente una pequeña incisión en el borde de la córnea, es necesario hacer la incisión con cuidado pero insistentemente, dado que la córnea tiene de 2 a 3 mm de grosor. Se nota que se ha calado la córnea por la salida del humor acuoso; proseguir después con las tijeras hasta desprender toda la córnea.

4. Apertura del globo ocular. Sujetar los bordes cortados con
los dedos y  revolver vaciando el interior del ojo. El humor vítreo sale fácilmente y podemos
hacerle que se deposite en la palma de la mano, llevando adherido sobre el mismo, el
cristalino.



Ojo con los músculos extendidos

 
Ojo diseccionado

Cristalino